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    RNA和DNA提取的降解問題

    降解問題是RNA制備中常常到的問題。因為在 RNA 提取過程中,樣品儲存不當或裂解效率低等情況都會導致降解。對于 DNA 提取,降解不是一個大問題,因為對于 PCR,DNA 可以被剪切并且工作正常,如果不希望有較多剪切的 DNA,可以使用弱裂解的方法。......閱讀全文

    RNA-和-DNA-提取的降解問題

    降解問題是RNA制備中常常到的問題。因為在 RNA 提取過程中,樣品儲存不當或裂解效率低等情況都會導致降解。對于 DNA 提取,降解不是一個大問題,因為對于 PCR,DNA 可以被剪切并且工作正常,如果不希望有較多剪切的 DNA,可以使用弱裂解的方法。

    RNA-和-DNA-提取:洗脫

    DNA 提取方案的還剩余IDE步驟步就是從硅膠中釋放純 DNA 或 RNA。對于 DNA 制備,通常使用 pH 值為 8-9 的 10 mM Tris。DNA 在弱堿性 pH 值下更穩定,在緩沖液中溶解得更快。即使對于 DNA 顆粒也是如此。水的 pH 值往往較低,低至 4-5,并且高分子量 DNA

    DNA和RNA提取原理

    TRIzol試劑有多組分分離作用,與其他方法如硫氰酸胍/酚法、酚/SDS法、鹽酸胍法、硫氰酸胍法等相比,最大特點是可同時分離一個樣品的RNA\DNA\蛋白質.TRIzol使樣品勻漿化,細胞裂解,溶解細胞內含物,同時因含有RNase抑制劑可保持RNA的完整性。在加入氯仿離心后,溶液分為水相和有機相,R

    RNA提取時RNA降解原因

    1 ) 新鮮細胞: 裂解液的量不足,使得裂解不充分。 2 ) 新鮮組織: 某些含有內源性核酸酶的樣品,很難避免RNA酶的降解,建議采用的方法為在液氮條件下將組織研碎,并且,勻漿時采用更多的裂解液。 3 ) 冷凍樣品: 樣品取材后應該迅速置于液氮中冷凍存放,然后轉移到-70℃冰箱存

    真菌DNA和RNA提取方法

    真菌DNA和RNA提取方法一、真菌DNA的提取(方法一)實驗試劑(1)DNA提取液:0.2M Tris-HCl(pH 7.5),0.5M NaCl,0.01M EDTA,1%SDS(2)3M NaAc(3)TE:10 mmol/L Tris-HCl pH8.0,1 mmol/L EDTA(4)酚(p

    真菌的DNA和RNA提取方法

    一、真菌DNA的提取(方法一)1.實驗試劑(1)DNA提取液:0.2M Tris-HCl(pH 7.5),0.5M NaCl,0.01M EDTA,1%SDS(2)3M NaAc(3)TE:10 mmol/L Tris-HCl pH8.0,1 mmol/L EDTA(4)酚(pH8.0):氯仿:異戊

    真菌的DNA和RNA提取方法

    一、真菌DNA的提取(方法一)1.實驗試劑(1)DNA提取液:0.2M Tris-HCl(pH 7.5),0.5M NaCl,0.01M EDTA,1%SDS(2)3M NaAc(3)TE:10 mmol/L Tris-HCl pH8.0,1 mmol/L EDTA(4)酚(pH8.0):氯仿:異戊

    真菌的DNA和RNA提取方法

    搞真菌基因功能研究的不可避免的總要涉及到DNA和RNA提取,由于真菌中有較多的多糖成分影響到所提DNA和RNA的質量和后續的分析。因此一個高質量的、實惠的提取方法是我們的優先選擇,在此分享一下我一直在用的提取方法,供大家參考。真菌DNA的提取(方法一)1.取真菌菌絲0.5g, 在液氮中迅速研磨成粉2

    真菌的DNA和RNA提取方法

    搞真菌基因功能研究的不可避免的總要涉及到DNA和RNA提取,由于真菌中有較多的多糖成分影響到所提DNA和RNA的質量和后續的分析。因此一個高質量的、實惠的提取方法是我們的優先選擇,在此分享一下我一直在用的提取方法,供大家參考。真菌DNA的提取(方法一)1.取真菌菌絲0.5g, 在液氮中迅速研磨成粉2

    RNA和DNA提取產量低的原因

    如果您遇到的 DNA/RNA 產量低于您對樣品的預期,則需要考慮許多因素。通常,這是一個裂解問題。不完全裂解是產量低的主要原因。它也可能是由不正確的綁定條件引起的。確保使用新鮮的優質乙醇(100% 200 標準)稀釋緩沖液或添加到結合的步驟。劣質乙醇或舊庫存可能已經吸收了水分,并且濃度不正確。如果洗

    核酸提取——RNA提取與DNA的提取

    核酸分為兩大類:一類為核糖核酸(RNA),另一類為脫氧核糖核酸(DNA)。核酸的分子量極大,從數萬到億萬。核酸是兩性化合物,在一定的等電點溶于水,其水溶液呈酸性,不溶于乙醇等有機溶劑。細胞內的核酸常和蛋白質結合成核蛋白。核糖核蛋白和脫氧核糖核蛋白在不同濃度的電解質溶液中 的溶解度有顯著區別,在一定濃

    核酸提取——RNA提取與DNA的提取

    核酸分為兩大類:一類為核糖核酸(RNA),另一類為脫氧核糖核酸(DNA)。核酸的分子量極大,從數萬到億萬。核酸是兩性化合物,在一定的等電點溶于水,其水溶液呈酸性,不溶于乙醇等有機溶劑。細胞內的核酸常和蛋白質結合成核蛋白。核糖核蛋白和脫氧核糖核蛋白在不同濃度的電解質溶液中 的溶解度有顯著區別,在一定濃

    RNA-和-DNA-提取的純度低的原因

    如果提取的 DNA 被蛋白質污染(低 260/280),那么您可能開始時樣品過多,而蛋白質沒有完全去除或溶解。如果 DNA 的 260/230 比率不佳,則問題通常是結合或洗滌緩沖液中的鹽分。確保使用最高質量的乙醇來制備洗滌緩沖液,如果問題仍然存在,請再次洗滌色譜柱。與其他樣品相比,一些樣品含有更多

    DNA提取方法洗滌-DNA(或-RNA)

    當裂解物通過硅膠膜進行離心分離,現在所提取的 DNA 或 RNA 應該與柱子結合,雜質、細胞蛋白和多糖應該已經通過了。?但是,膜仍然被殘留的細胞蛋白質和鹽弄臟。如果樣品來自植物,仍然會有多糖,也許一些色素留在膜上,或者如果樣品是血液,膜可能會被染成棕色或黃色。洗滌步驟用于去除這些雜質。通常有兩次洗滌

    RNA提取心得(組織RNA提取和培養細胞的RNA提取)

    一.組織RNA提取 1.最好新鮮組織,這樣RNA提取的效果比較好,這是肯定的。 2. 如果不是新鮮的(最好在半年之內,-80℃或者液氮中凍存的)組織,注意不要反復凍融,從冰凍狀態拿到0-4℃,注意不要拿到常溫,待組織解凍后,用 DEPC泡過的剪刀剪一小塊組織,稱重后,放到預冷的勻漿器中,然后

    福爾馬林:保存標本-幫助DNA和RNA的提取

      在歷史上人們使用了各種固定液(各種濃度的乙醇和福爾馬林,目前公認的固定液是10%的中性福爾馬林溶液)。馬爾福林基本的固定能力是通過蛋白質交聯,從而使固定物質更加牢固。福爾馬林還可以作為適合基因組研究的培養基,比如DNA和RNA的提取研究。  DNA和RNA的恢復,對于許多科學領域和醫學專業都非常

    生物薄膜DNA、RNA提取要點

    ?早前的文章我們討論過了生物薄膜(biofilm)樣品的基本特性以及影響樣品制備和處理方法的因素。今天我們與你分享提取生物薄膜樣品DNA或RNA的幾個要點。下面列是我們處理了大量各種類型生物薄膜和微生物墊(biomats)總結出來的,以及與我們聯合共同開發PowerBiofilm Kit的科學家的經

    提取的DNA中含有蛋白質和RNA污染

    提取的時候飽和酚,氯仿需要定量,這些可以去蛋白。去除RNA污染,RNA酶活性,定量。凝膠電泳,試劑最好是即用型的,因為有些東西放久了會長菌。然后是染料的熱穩定性和靈敏度。

    RNA提取得率低問題

    該組織或者細胞中RNA含量偏低:不同細胞和組織中RNA的豐度不同,如肝臟,胰腺,心臟等是高豐度組織(總RNA含量2-4μg/mg),腦,胚胎,腎臟,肺,胸腺,卵巢等是中豐度組織(總RNA含量0.05-2μg/mg),膀胱,骨,脂肪等是低豐度組織(總RNA含量

    RNA降解

    新鮮細胞:如果試劑沒有問題,且外源性污染也可以排除,那么降解幾乎都來自裂解液的用量不足。如? 果將裂解液直接加入培養皿中裂解細胞,一定要使裂解液能覆蓋住細胞。 2. 新鮮組織:某些富含內源核酸酶的樣品(如肝臟,胸腺等),即使使用電動勻漿器勻漿也不能避免RNA的降解。更可靠的方法是:在液氮條件下將組織

    如何說明DNA提取中有RNA污染

    測OD的方法是測不出RNA污染的,因為RNA的260/280的值和DNA近似.電泳檢測的話,主要是看RNA的含量.換而言之,實際上最相關的是你提取的時候的組織的生長狀況.一般來說,如果是分生組織等提取的DNA,會有較大的RNA污染.這時候你做電泳可以明確看到RNA的條帶,而且有時候會比DNA帶更為明

    如何說明DNA提取中有RNA污染

    測OD的方法是測不出RNA污染的,因為RNA的260/280的值和DNA近似.電泳檢測的話,主要是看RNA的含量.換而言之,實際上最相關的是你提取的時候的組織的生長狀況.一般來說,如果是分生組織等提取的DNA,會有較大的RNA污染.這時候你做電泳可以明確看到RNA的條帶,而且有時候會比DNA帶更為明

    提取RNA時如何去除DNA的污染

    提取RNA時如何去除DNA的污染的方法:注意實驗室的標準化問題,注意污染的存在,同時嚴格按照說明書上的操作應該沒有問題。發現DNA污染,用DNAse I 消化1小時,37度離心取上清的時候,一定要小心不要取到中間的膜和下面的液體。直接加NaOH溶液與提取液混合攪拌,然后離心就可以了.因為RNA可溶于

    如何檢測、評價提取的DNA、RNA質量

    4.如何檢測、評價提取的DNA、RNA質量,計算提取的DNA、RNA濃度:一般通過OD260/OD280來判斷他們的含量,純DNA的比值一般在1.8,大于1.8,小于2時可能有RNA污染,在1.9到2.0時RNA純度高,小于1.8時可能有蛋白質污染,大于2.0時可能在提取過程中的化學物質殘留。提取原

    總RNA提取常見問題分析

    Q:RNA降解? ?A:1. 新鮮細胞:如果試劑沒有問題,且外源性污染也可以排除,那么降解幾乎都來自裂解液的用量不足。如??果將裂解液直接加入培養皿中裂解細胞,一定要使裂解液能覆蓋住細胞。?2. 新鮮組織:某些富含內源核酸酶的樣品(如肝臟,胸腺等),即使使用電動勻漿器勻漿也不能避免RNA的降解。更可

    多位專家指導:如何提取和研究血液DNA,RNA與蛋白

      血液是唯一與所有器官都有接觸的組織,攜帶著有關機體的大量寶貴信息。在理論上,檢測血液攜帶的 DNA、RNA、囊泡和細胞殘骸可以幫助人們診斷和監控各種疾病。  產前基因篩查是血液檢測的一個重要應用,通過分析孕婦血液中的胎兒DNA來鑒定染色體異常(比如唐氏綜合癥)。此外,越來越多的研究者開始關注血液

    提取RNA的時候總是有DNA污染

    不管RNA還是RT之后做pcr,RNA都要變成cDNA之后才能做pcr。確定用DNase I處理過,電泳沒有DNA條帶了。一般RT用oligo dt或者隨機引物做擴增。也有用你想的目的片段的擴增引物做RT的。你看看你現在用的是什么引物,換oligo試試,不行換成你的基因特異性引物做了RT之后,再來p

    提取的基因組DNA有降解如何解決

    選取的材料不新鮮或反復凍融,采集材料后未及時處理或未低溫保存:陳舊血液或不新鮮的材料中,細胞凋亡導致DNA降解,或者低溫保存的樣品經反復凍融導致細胞破碎,內源性核酸酶降解DNA,因此應該選用新鮮的材料樣品,不能及時處理則低溫保存,運輸過程中應該使用干冰: 1 ) 未能有效的抑制內源性核酸酶的作用

    提取RNA中老混有DNA怎樣去除

    先用酚:氯仿:異戊醇(25:24:1)抽提,這時候經常在樣品中會有酚殘留,所以之后再用氯仿:異戊醇(24:1)抽提,將酚抽干凈,以免影響后續的實驗.在抽提前還要在DNA樣品中加入1/10體積的PH5.2的3M醋酸鈉,增加鹽濃度,以免DNA沉淀出來的量太少,都被抽走了.還有最好在抽提之前要把DNA樣品

    常規組織樣本核酸(DNA/RNA)提取純化

    20 分鐘內快速純化高品質,高產量,即用型 DNA(見圖 20)多種規格可選擇:Mini Kit 可處理 25 mg 組織,Micro Kit 可處理小于 10 mg 組織完全去除污染物和抑制劑可在 QIAcube 上進行自動化純化表1 QIAamp DNA Mini Kit純化各類樣本的核酸產量樣

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