高GC含量片段的PCR擴增實驗
試劑、試劑盒甜菜堿dNTP 溶液二甲基亞砜四甲基砜Taq 酶和酶緩沖引物儀器、耗材PCR 儀實驗步驟一、材料1. 試劑甜菜堿（Sigma 公司）dNTP 溶液（含四種 dNTP, 每種 25 mmol/L)二甲基亞砜（DMSO)(Sigma 公司）四甲基砜（Sigma 公司）2. 酶和酶緩沖液Taq 酶Taq 酶緩沖液（Taq 酶制造商提供）3. 核酸和寡核苷酸人類基因組 DNA，每個反應中 20ng，hRF3(hGSPTl) 引物：hRF3f CCGC/CTCT/GTCG/TCGT/CGC &nbs......閱讀全文
多重－PCR－擴增實驗
試劑、試劑盒 Taq 聚合酶溶于水的 DNA引物儀器、耗材 熱循環儀實驗步驟 一、材料1. 酶和酶緩沖液Taq 聚合酶許多 Taq 聚合酶都可以用；作者發現 Roche 公司的 Taq 聚合酶可以滿足大多數需要. 如果需要提高PCR 產物的特異性，應該使用熱啟動聚合酶。使用 Tag 聚合酶本身附帶的
多重－PCR－擴增實驗
? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 多重PCR（multiplex PCR），其反應原理，反應試劑和操作過程與一般PCR相同。一般PCR僅應用一對引物，通過PCR擴增產生一個核酸片段，主要用于單一致病因子等的鑒定。重PCR的特點有：①高效性在同一PCR反應管內同時
PCR基因擴增實驗
[實驗目的]通過本實驗學習PCR反應的基本原理與實驗技術。[實驗原理]多聚酶鏈式反應（polymerase chain reaction,PCR）的原理類似于DNA的天然復制過程。在待擴增的DNA片段兩側和與其兩側互補的兩個寡核苷酸引物，經變性、退火和延伸若干個循環后，DNA擴增2n倍。1．變性：加
多重－PCR－擴增實驗
多重PCR擴增實驗可以用于：（1）在同一PCR反應管內同時檢出多種病原微生物，或對有多個型別的目的基因進行分型，特別是用一滴血就可檢測多種病原體；（2）多重PCR很適宜于成組病原體的檢測，如肝炎病毒，腸道致病性細菌，性病，無芽胞厭氧菌，戰傷感染細菌及細菌戰劑的同時偵檢；（3）多種病原體在同一反應管內
差異－DNA－的－PCR－擴增實驗
實驗步驟 一、材料1. 緩沖液、溶液和試劑dNTP 溶液（包含所有 4 種 dNTP，各 10 mmol/L)2. 酶和酶緩沖液PCR 反應緩沖液，10X聚合酶混合液，50X(Advantage2，Clontech，或相當產品）3. 核酸和寡核苷
差異－DNA－的－PCR－擴增實驗
在本方案所描述的反應中，差異 DNA 被選擇性地擴增。每個實驗至少應該有 4 個反應：①已消減的檢測 DNA;②未消減的檢測者對照（1-c);③反向消減的檢測 DNA;④反向未消減的對照（2-c)。本實驗來源于 PCR 實驗指南（第二版），作者：種康，瞿禮嘉。實驗步驟一、材料1. 緩沖液、溶液和試劑
差異－DNA－的－PCR－擴增實驗
實驗步驟 一、材料1. 緩沖液、溶液和試劑dNTP 溶液（包含所有 4 種 dNTP，各 10 mmol/L)2. 酶和酶緩沖液PCR 反應緩沖液，10X聚合酶混合液，50X(Advantage2，Clontech，或相當產品）3. 核酸和寡核苷酸DNA 樣品（即方案 2 第 16 步中的各消減樣品
PCR基因擴增儀實驗原理
技術應用實現快速高效均衡擴增檢測由光開關陣列、自聚焦透鏡和尾纖準直器及變增益微光O/E裝置組成的MEMS有機整體，在以16位單片機為核心的電控裝置管理下，能在毫秒級時間內完成多個標本快速均衡掃描檢測，避免了機械掃描方式或CCD掃描方式引起的時間滯后或漸暈誤差。實現標準樣本的PCR熱循環擴增及高通量實
實驗分析方法PCR擴增產物
孔板夾心雜交法： 該法是通過一固定于微孔板的捕獲探針與PCR產物的某一區域特 異雜交使產物的間接地固定于微孔板上，然后，再用一生物素 等非放射性標記物標記的檢測探針與產物的另一特異性較一次 雜交，漂洗后顯色即可判斷結果。該法需要兩個雜交過程來檢測 一個產物，因此，其特異性較一次雜交的檢測法高。該法
高－GC－含量片段的－PCR－擴增實驗
? ? ? ? ? ? 試劑、試劑盒 甜菜堿 dNTP 溶液 二甲基亞砜 四甲基砜 Taq 酶和酶緩沖引物 儀器、耗材
高－GC－含量片段的－PCR－擴增實驗
試劑、試劑盒 甜菜堿dNTP 溶液二甲基亞砜四甲基砜Taq 酶和酶緩沖引物儀器、耗材 PCR 儀實驗步驟 一、材料1. 試劑甜菜堿（Sigma 公司）dNTP 溶液（含四種 dNTP, 每種 25 mmol/L)二甲基亞砜（DMSO)(Sigma 公司）四甲基砜（Sigma 公司）2. 酶和酶緩沖液
熒光定量PCR實驗中的擴增對照
通常說的陽性對照和陰性對照指的是擴增試劑盒中附帶的不需要提取的陽性對照和陰性對照，更準確的定義應該是擴增陽性對照和擴增陰性對照。擴增陽性對照含有陽性擴增模板，擴增陰性對照應含有陰性擴增模板（基質核酸）。擴增對照只能監控每次擴增過程中的擴增系統是否正常，不能監控采樣、提取和每份樣品的操作過程。如果是檢
高－GC－含量片段的－PCR－擴增實驗
試劑、試劑盒甜菜堿dNTP 溶液二甲基亞砜四甲基砜Taq 酶和酶緩沖引物儀器、耗材PCR 儀實驗步驟一、材料1. 試劑甜菜堿（Sigma 公司）dNTP 溶液（含四種 dNTP, 每種 25 mmol/L)二甲基亞砜（DMSO)(Sigma 公司）四甲基砜（Sigma 公司）2. 酶和酶緩沖液Taq
PCR擴增產物克隆的實驗要點
引物設計主要是要注意以下幾個事項： （1）發夾結構； （2）反向配對； （3）GC含量（40－60%）； （4）退火溫度（45－65度）； （5）引物長度（18－27bp）； （6）3' 端最好是C、G（提高結合度）； （7）引物在序列中的錯配位點。 大致就這幾個方面，重要性
PCR擴增過程
①首先是將含有待擴增DNA樣品的反應混合物放置在高溫（>91℃）環境下加熱1分鐘，使雙鏈DNA變性，形成單鏈模板DNA；②降低反應溫度（約50℃），致冷1分鐘，使寡核苷酸引物與兩條單鏈模板DNA發生退火作用并結合在靶DNA區段兩端的互補序列位置上;③將反應混合物的溫度上升到72左右保溫1-數分鐘，在
PCR基因擴增
實驗概要PCR擴增目標DNA片段。實驗原理多聚酶鏈式反應（polymerase chain reaction, PCR）基本原理類似于DNA的天然復制過程，其特異性依賴于與靶序列兩端互補的寡核苷酸引物。PCR由變性、退火、延伸三個基本反應步驟構成。? 1. 模板DNA的變性：模板DNA經加熱至93℃
PCR擴增儀
聚合酶鏈鎖反應，Polymerase chain reaction，簡稱PCR，是一種分子生物學技術，用于擴增特定的DNA片段，這種方法可在生物體外進行，不必依賴大腸桿菌或酵母菌等生物體。PCR這項技術，被廣泛地運用在醫學和生物學的實驗室，例如用于判斷檢體中是否會表現某遺傳疾病的圖譜、傳染病的診
PCR擴增過程
①首先是將含有待擴增DNA樣品的反應混合物放置在高溫（>91℃）環境下加熱1分鐘,使雙鏈DNA變性,形成單鏈模板DNA；②降低反應溫度（約50℃）,致冷1分鐘,使寡核苷酸引物與兩條單鏈模板DNA發生退火作用并結合在靶DNA區段兩端的互補序列位置上;③將反應混合物的溫度上升到72左右保溫1-數分鐘,在
基因的PCR擴增實驗擴增不出DNA條帶是什么原因
可能有很多原因，最常見的原因是1.模板不干凈，2.引物設計不當，3.退火溫度過高，等等
PCR基因擴增及擴增產物的回收實驗原理及過程
實驗目的 為了獲得大量的AKP基因，我們需要將目的基因通過PCR擴增基因劑量，方便下一步實驗作基因重組。 我們需要注意PCR產物的準確性和產率。特別注意引物、復性溫度、TaqE對準確性的影響和延伸時間（1000bp/min）、Mg2+濃度、循環數（小于等于30）對產率的影響。
PCR擴增DNA（PCR－Amplify－DNA）實驗原理、材料和操作步驟
【實驗原理】聚合酶鏈反應（polymerasechainreaction，PCR）是一種體外 DNA擴增技術，1985年由Mullis等人創立。該技術能在幾小時的實驗操作中，將人為選定的一段DNA擴增幾百萬倍，具有靈敏度高、特異性強、操作簡便和應用廣泛等優點，目前已成為分子生物學及基因工程中極為
PCR擴增實驗中加樣順序是怎樣的
語文DNA的半保留復制是生物進化和傳代的重要途徑。雙鏈DNA在多種酶的作用下可以變性解旋成單鏈，在DNA聚合酶的參與下，根據堿基互補配對原則復制成同樣的兩分子拷貝。在實驗中發現，DNA在高溫時也可以發生變性解鏈，當溫度降低后又可以復性成為雙鏈。因此，通過溫度變化控制DNA的變性和復性，加入設計引物，
模板－DNA－的準備、實驗的組織和－PCR－擴增實驗
? ? ? ? ? ? 試劑、試劑盒 PCR 緩沖液 ddH20 基因組 DNA dNTP 寡核苷酸引物 儀器、耗材
基因的PCR擴增實驗原理、實驗材料和操作步驟
實驗原理單鏈DNA在互補寡聚核苷酸片段的引導下，可以利用DNA聚合酶按5’→3’方向復制出互補DNA。這時單鏈DNA稱為模板DNA，寡聚核苷酸片段稱為引物（Primer），合成的互補DNA稱為產物DNA。雙鏈DNA分子經高溫變性后成為兩條單鏈DNA，它們都可作為單鏈模板DNA，在相應的引物引導下，用
模板－DNA－的準備、實驗的組織和－PCR－擴增實驗
試劑、試劑盒 PCR 緩沖液ddH20基因組 DNAdNTP寡核苷酸引物儀器、耗材 離心機和轉子丙烯酸防護板過濾阻擋吸頭多道移液器PCR 儀托盤 固定器裝置底座管蓋小管實驗步驟 一、材料1. 緩沖液、溶液和試劑含 15 mmol/LMgCl2 的 10XPCR 緩沖液 (GeneAmpPCR 緩沖液
模板－DNA－的準備、實驗的組織和－PCR－擴增實驗
可以用各種方法分離基因組 DNA, 主要決定于初始材料的種類（血液還是組織）和數量。所有制備的 DNA 都應該儲存于 pH8.0 的 TE 緩沖液中并裝在滅菌的 Eppendorf 管內。本實驗來源于 PCR 實驗指南（第二版），作者：種康，瞿禮嘉。試劑、試劑盒PCR 緩沖液ddH20基因組 DNA
PCR擴增儀步驟
一般的PCR反應由20到35個循環組成，每個循環包括以下3個步驟：利用高溫(93-98℃)使雙鏈DNA分離(熔解)。高溫將連接兩條DNA鏈的氫鍵打斷。在第一個循環之前，通常加熱長一些時間以確保模板和引物完全分離，僅以單鏈形式存在。該步驟時間1-2分鐘。在DNA雙鏈分離后，降低溫度使得引物可以結合于單
PCR擴增的步驟
PCR由變性--退火--延伸三個基本反應步驟構成：模板DNA的變性模板DNA經加 熱至93℃左右一定時間后，使模板DNA雙鏈或經PCR擴增形成的雙鏈DNA解離，使之成為單鏈，以便它與引物結合，為下輪反應作準備；模板DNA與引 物的退火(復性)模板DNA經加熱變性成單鏈后，溫度降至55℃左右，引物與模
核酸擴增—多重PCR
多重PCR是在單一PCR基礎上改進和發展起來的新技術，是在同一PCR體系中加入多對特異性引物，一次擴增多個DNA片斷，實現多個基因序列或多種病原體的同時檢出。多重PCR降低了檢測成本，減少了工作量，提高了檢測效率，并且可以解決淋球菌、衣原體等混合感染者臨床癥狀不明顯，檢出率低等問題。淋病患者往往
PCR擴增的步驟
PCR由變性--退火--延伸三個基本反應步驟構成：模板DNA的變性模板DNA經加 熱至93℃左右一定時間后，使模板DNA雙鏈或經PCR擴增形成的雙鏈DNA解離，使之成為單鏈，以便它與引物結合，為下輪反應作準備；模板DNA與引 物的退火(復性)模板DNA經加熱變性成單鏈后，溫度降至55℃左右，引物與模