轉膜時間過長，電壓過大會不會對蛋白有影響
確定是轉膜不穩定造成的而不是電泳的問題？電泳后的條帶正常？可能很多原因~轉膜液離子強度不對~轉膜電壓電流不穩定~轉膜儀的問題~一般來說濕轉比半干轉更穩定一些~只不過時間長~......閱讀全文
小分子轉膜時間
小分子的話就不要過夜轉,采取100V一小時應該就可以了,注意降溫。知識補充蛋白的分子量 是理論的分子量 其實還可能有一些修飾的 比如乙酰化 糖基化等那么要考慮分子量的問題 其次 你買的抗體怎么樣？特異性 效價 親和力等 是否適合做WB？ 再次 你可以用預染的蛋白marker試一試 確定你的目的蛋白沒
western轉膜時間和電流
300mA90分鐘,我們是1.0的膠厚度,要是0.75也行,但1.5mm的厚膠要時間長一些,另外你做的蛋白如果超過100kd建議時間更長一些,若是小蛋白就減少轉模時間,立春紅確定最適時間
轉膜時間太長，小蛋白會不會從膜中穿過
影響因素應該有很多；一、首先需確定目的蛋白是否在膠上：跑完電泳可以先考馬斯亮藍染膠，如果在marker的指示下看到了目的蛋白的清晰條帶，基本可以確定蛋白已經在膠上跑開。二、膜的準備：1.根據被轉移的蛋白分子量大小，選擇不同孔徑的pvdf膜。因為隨著膜孔徑的不斷減小，膜對低分子量蛋白的結合就越牢固。通
轉膜時間太長，小蛋白會不會從膜中穿過
影響因素應該有很多；一、首先需確定目的蛋白是否在膠上：跑完電泳可以先考馬斯亮藍染膠，如果在marker的指示下看到了目的蛋白的清晰條帶，基本可以確定蛋白已經在膠上跑開。二、膜的準備：1.根據被轉移的蛋白分子量大小，選擇不同孔徑的pvdf膜。因為隨著膜孔徑的不斷減小，膜對低分子量蛋白的結合就越牢固。通
轉膜時間太長，小蛋白會不會從膜中穿過
影響因素應該有很多；一、首先需確定目的蛋白是否在膠上：跑完電泳可以先考馬斯亮藍染膠，如果在marker的指示下看到了目的蛋白的清晰條帶，基本可以確定蛋白已經在膠上跑開。二、膜的準備：1.根據被轉移的蛋白分子量大小，選擇不同孔徑的pvdf膜。因為隨著膜孔徑的不斷減小，膜對低分子量蛋白的結合就越牢固。通
目的蛋白分子量與轉膜時間對應關系
轉膜分干轉和濕轉，恒流轉膜一般0.8mA/cm2分子量與轉膜時間對應關系分離膠濃度（％） 線性分離范圍 電泳時間(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0
目的蛋白分子量與轉膜時間對應關系
轉膜分干轉和濕轉，恒流轉膜一般0.8mA/cm2分子量與轉膜時間對應關系分離膠濃度（％） 線性分離范圍 電泳時間(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0
目的蛋白分子量與轉膜時間對應關系
轉膜分干轉和濕轉，恒流轉膜一般0.8mA/cm2分子量與轉膜時間對應關系分離膠濃度（％） 線性分離范圍 電泳時間(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0
目的蛋白分子量與轉膜時間對應關系
轉膜分干轉和濕轉，恒流轉膜一般0.8mA/cm2分子量與轉膜時間對應關系分離膠濃度（％） 線性分離范圍 電泳時間(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0
目的蛋白分子量與轉膜時間對應關系
轉膜分干轉和濕轉，恒流轉膜一般0.8mA/cm2分子量與轉膜時間對應關系分離膠濃度（％） 線性分離范圍 電泳時間(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0
目的蛋白分子量與轉膜時間對應關系
轉膜分干轉和濕轉，恒流轉膜一般0.8mA/cm2分子量與轉膜時間對應關系分離膠濃度（％） 線性分離范圍 電泳時間(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0
目的蛋白分子量與轉膜時間對應關系
轉膜分干轉和濕轉，恒流轉膜一般0.8mA/cm2分子量與轉膜時間對應關系分離膠濃度（％） 線性分離范圍 電泳時間(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0
目的蛋白分子量與轉膜時間對應關系
轉膜分干轉和濕轉，恒流轉膜一般0.8mA/cm2分子量與轉膜時間對應關系分離膠濃度（％） 線性分離范圍 電泳時間(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0
電泳、轉膜
轉膜是把DNA從瓊脂糖凝膠中轉移到固相支持物（一般是尼龍膜）上固定，是進行各種后續研究（如RFLP分析，陽性克隆的篩選驗證等所有涉及分子雜交的研究）的前提。實驗目的：掌握Southern blotting的原理及操作步驟。實驗原理：1. 轉膜的方式： 向上的毛細管轉移 向下的毛細管轉移 同時向
分子量在22kd轉膜時間可為多少
分子量相差太大，建議分開轉：22kD按常規轉膜時間；大分子量（170kD）蛋白延長轉膜時間或提高轉膜電壓（注意保持低轉膜溫度）；如果二者必須一起轉，那就適當延長轉膜時間吧，希望你的22kD不要轉過了。
lc3的轉膜時間多少電壓電流多大
轉膜的時候電壓40v，可以看到電流先下降后上升。我轉膜的時候就這樣的，轉膜效果挺好的。轉膜液隨著使用次數增多，電阻增大，相應電流下，電壓增大，建議每次轉膜液使用2～3次就換新的，這個是正常的，恒壓的時候，電流也是會變化的，這是關于電泳液的問題，用的時間久了就會出現這樣的問題，可以經常換電泳液
Western轉膜步驟
下面的步驟適用于通過Xcell Ⅱ轉印系統進行蛋白印記的大部分應用。為達到最佳效果，用戶的優化是必要的。I. 所需材料：?Xcell SureLock?或Xcell Ⅱ? Mini-Cell以及Blot Module（Cat. Nos. EI10001, EI9001及EI9051）?電泳后的迷你膠
電泳、轉膜概述
轉膜是把DNA 從瓊脂糖凝膠中轉移到固相支持物（一般是尼龍膜）上固定，是進行各種后續研究（如 RFLP 分析，陽性克隆的篩選驗證等所有涉及分子雜交的研究）的前提。實驗目的：掌握 Southern blotting 的原理及操作步驟實驗原理：1．轉膜的方式：向上的毛細管轉移向下的毛細管轉移同時向兩張膜
Southern轉膜方法
Southern轉膜方法（毛細管虹吸印跡法、電轉移法與真空轉移法）將凝膠中的DNA進行堿變性并將pH值恢復至中性后，即可將凝膠中的DNA片段轉移到固相支持物上。用于轉膜的固相支持物有多種，包括硝酸纖維素濾膜(NCM)、尼龍膜、化學活性膜和濾紙等，Southern轉膜時可根據需要選擇不同的固相支持物用
WB轉膜時間與分子量及膠厚度的關系
分子量越大轉膜時間越長，60KD轉膜可以用300毫安恒流100min，20KD的話一個小時足夠了，膠越厚越不容易轉完全，不建議用1.5的膠。
轉膜時間過長，電壓過大會不會對蛋白有影響
確定是轉膜不穩定造成的而不是電泳的問題？電泳后的條帶正常？可能很多原因~轉膜液離子強度不對~轉膜電壓電流不穩定~轉膜儀的問題~一般來說濕轉比半干轉更穩定一些~只不過時間長~
轉膜時間過長，電壓過大會不會對蛋白有影響
確定是轉膜不穩定造成的而不是電泳的問題？電泳后的條帶正常？可能很多原因~轉膜液離子強度不對~轉膜電壓電流不穩定~轉膜儀的問題~一般來說濕轉比半干轉更穩定一些~只不過時間長~
轉膜時間過長，電壓過大會不會對蛋白有影響
確定是轉膜不穩定造成的而不是電泳的問題？電泳后的條帶正常？可能很多原因~轉膜液離子強度不對~轉膜電壓電流不穩定~轉膜儀的問題~一般來說濕轉比半干轉更穩定一些~只不過時間長~
western－blot實驗怎么樣轉膜能夠節省時間
轉膜你用的是濕轉的方法嗎？濕轉速度比較慢，一般的半干轉能快點，30-45min轉完，現在市面上有很多快速半干轉，3-15min可以完成轉印，可以在轉膜這一步節約一些時間。我還能想到另外一個可以節約時間的部分，就是檢測，如果以前壓膠片，現在可以考慮用成像儀，這個也可以節省一些時間。至于抗體孵育的時間，
轉膜時間過長，電壓過大會不會對蛋白有影響
確定是轉膜不穩定造成的而不是電泳的問題？電泳后的條帶正常？可能很多原因~轉膜液離子強度不對~轉膜電壓電流不穩定~轉膜儀的問題~一般來說濕轉比半干轉更穩定一些~只不過時間長~
轉膜時間過長，電壓過大會不會對蛋白有影響
確定是轉膜不穩定造成的而不是電泳的問題？電泳后的條帶正常？可能很多原因~轉膜液離子強度不對~轉膜電壓電流不穩定~轉膜儀的問題~一般來說濕轉比半干轉更穩定一些~只不過時間長~
轉膜時間過長，電壓過大會不會對蛋白有影響
確定是轉膜不穩定造成的而不是電泳的問題？電泳后的條帶正常？可能很多原因~轉膜液離子強度不對~轉膜電壓電流不穩定~轉膜儀的問題~一般來說濕轉比半干轉更穩定一些~只不過時間長~
western轉膜放置問題
1. 定義轉膜時與膠接觸的一面為“正”2. 封閉時使用封閉液，液體蓋過膜就好，所以無所謂正反3. 假如用暗室顯影法，將顯影的試劑與“正”面接觸，膠片與“正面”接觸4. 假如用熒光的話，理論上“正”面朝下，掃描，但實際操作過程中貌似都可以的
wb轉膜條件公式
wb轉膜條件公式：10% SDS溶液(m/v)。將電泳后分離的蛋白質從凝膠中轉移到固相載體（例如NC膜）上，通常有兩種方法：毛細管印跡法和電泳印跡法。常用的電泳轉移方法有濕轉和半干轉。兩者的原理完全相同，只是用于固定膠/膜疊層和施加電場的機械裝置不同。前者操作容易，轉移效率高；而后者適用于大膠的蛋白
wb轉膜條件公式
wb轉膜條件公式：10% SDS溶液(m/v)。將電泳后分離的蛋白質從凝膠中轉移到固相載體（例如NC膜）上，通常有兩種方法：毛細管印跡法和電泳印跡法。常用的電泳轉移方法有濕轉和半干轉。兩者的原理完全相同，只是用于固定膠/膜疊層和施加電場的機械裝置不同。前者操作容易，轉移效率高；而后者適用于大膠的蛋白