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    小鼠精原細胞的分離和純化

    【摘要】 目的 探討小鼠精原細胞的分離純化。 方法 用組合酶消化法制備7~8d小鼠的生殖細胞懸液;用Percoll不連續密度梯度法分離精原細胞。 結果 所獲細胞懸液內活細胞、死細胞及細胞團的百分比分別為90.08%、9.92%及8.91%;平均每個睪丸可獲得4.136×105個細胞;精原細胞主要分布于位于27%~35%間的Percoll梯度中,其超微結構與7~8d小鼠睪丸切片內精原細胞的超微結構一致,經純化后其純度達68.76%。 結論 用組合酶消化、Percoll不連續密度梯度法分離的7~8d小鼠的精原細胞能滿足體外培養的需要。 【關鍵詞】 精原細胞;分離;小鼠 【中圖分類號】 S865.1+30.1 【文獻標識碼】 A 【文章編號】 0529-1356(2000)03-235SEPARATION AND PURIFICATION OF SPERMATOGONIA IN MOUSEZHANG Xue-ming, LAI L......閱讀全文

    小鼠精原細胞的分離和純化

    【摘要】 目的 探討小鼠精原細胞的分離純化。 方法 用組合酶消化法制備7~8d小鼠的生殖細胞懸液;用Percoll不連續密度梯度法分離精原細胞。 結果 所獲細胞懸液內活細胞、死細胞及細胞團的百分比分別為90.08%、9.92%及8.91%;平均每個睪丸可獲得4.136×105個細胞;精原細胞主要分布

    小鼠精原細胞的分離和純化

    【摘要】 目的 探討小鼠精原細胞的分離純化。 方法 用組合酶消化法制備7~8d小鼠的生殖細胞懸液;用Percoll不連續密度梯度法分離精原細胞。 結果 所獲細胞懸液內活細胞、死細胞及細胞團的百分比分別為90.08%、9.92%及8.91%;平均每個睪丸可獲得4.136×105個細胞;精原細胞主要分布

    小鼠精原細胞的分離和純化

    【摘要】 目的 探討小鼠精原細胞的分離純化。 方法 用組合酶消化法制備7~8d小鼠的生殖細胞懸液;用Percoll不連續密度梯度法分離精原細胞。 結果 所獲細胞懸液內活細胞、死細胞及細胞團的百分比分別為90.08%、9.92%及8.91%;平均每個睪丸可獲得4.136×105個細胞;精原細胞主要分布

    小鼠精原細胞的分離和純化

    實驗概要精原細胞的生理生化特性及其分裂增殖、分化、運動、衰老、死亡等項生命活動的調節機制的深入研究,精子發生機理的進一步闡明以及精原細胞異體、異種移植技術的實際應用,都迫切需要找到一種可行的方法將其分離純化,以期得到較高產量和純度的有活力的精原細胞,用于體外培養。資料表明,從成年嚙齒類的睪丸分離粗線

    長白豬精原細胞的分離和純化

    一、材料和方法1、實驗動物長白種系公豬,2月齡,由北京養豬中心葦溝現代化豬場提供。取活體睪丸,立即放入1640營養液中,待分離細胞。2、主要試劑及材料膠原酶(CLS,Sigma),胰蛋白酶(Sigma),脫氧核糖核酸酶(DNase,Promega),牛血清白蛋白(BSA,中國醫學科學院天津血液研究所

    長白豬精原細胞的分離和純化

    ? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 酶消化法制備2月齡未成熟長白豬睪丸組織的單細胞懸液,以 2 %~4 %牛血清白蛋白 (BSA)連續梯度作為分離介質,采用重力沉降法并結合細胞貼壁培養的方法分離精原細胞。 實驗

    長白豬精原細胞的分離和純化

    實驗方法原理酶消化法制備2月齡未成熟長白豬睪丸組織的單細胞懸液,以 2 %~4 %牛血清白蛋白 (BSA)連續梯度作為分離介質,采用重力沉降法并結合細胞貼壁培養的方法分離精原細胞。實驗材料長白種系公豬 ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?

    長白豬精原細胞的分離和純化

    實驗方法原理酶消化法制備2月齡未成熟長白豬睪丸組織的單細胞懸液,以 2 %~4 %牛血清白蛋白 (BSA)連續梯度作為分離介質,采用重力沉降法并結合細胞貼壁培養的方法分離精原細胞。實驗材料長白種系公豬試劑、試劑盒膠原酶胰蛋白酶脫氧核糖核酸酶牛血清白蛋白胎牛血清RPMI 1640培養基HE染液PBS儀

    小鼠胰島分離與純化

    實驗概要小鼠胰島分離與純化實驗步驟一、準備工作:1、小鼠:小鼠應該毛色光滑,并根據實驗需要選擇合適的性別及年齡。2、準備試劑:Hanks液?、P型酶(Roche)?、FBS?、1640培養基(含7mM glucose 10%FBS)3、準備器具:眼科剪1把?,眼科鑷(直)2把,動脈止血夾(75px)

    用Percoll不連續密度梯度法分離小鼠精原細胞的方法介紹

    目的 探討小鼠精原細胞的分離純化。 方法 用組合酶消化法制備7~8d小鼠的生殖細胞懸液;用Percoll不連續密度梯度法分離精原細胞。 結果 所獲細胞懸液內活細胞、死細胞及細胞團的百分比分別為90.08%、9.92%及8.91%;平均每個睪丸可獲得4.136×105個細胞;精原細胞主要分布于位于27

    用Percoll不連續密度梯度法分離小鼠精原細胞的方法詳解

    精原細胞的生理生化特性及其分裂增殖、分化、運動、衰老、死亡等項生命活動的調節機制的深入研究,精子發生機理的進一步闡明以及精原細胞異體、異種移植技術的實際應用,都迫切需要找到一種可行的方法將其分離純化,以期得到較高產量和純度的有活力的精原細胞,用于體外培養。資料表明,從成年嚙齒類的睪丸分離粗線期及其后

    酶的提取和分離純化

    (一)細胞破碎處理 許多酶都存在于細胞內。為了提取這些胞內酶,首先需要對細胞進行破碎處理。細胞破碎的方法很多,主要包括機械破碎法、物理破碎法、化學破碎法和酶學破碎法等。機械破碎法是指利用搗碎機、研磨器或勻漿器等將細胞破碎。物理破碎法是指利用溫度差、壓力差或超聲波等將細胞破碎。化學破碎法是指

    酶的提取和分離純化

      (一)細胞破碎處理  許多酶都存在于細胞內。為了提取這些胞內酶,首先需要對細胞進行破碎處理。細胞破碎的方法很多,主要包括機械破碎法、物理破碎法、化學破碎法和酶學破碎法等。機械破碎法是指利用搗碎機、研磨器或勻漿器等將細胞破碎。物理破碎法是指利用溫度差、壓力差或超聲波等將細胞破碎。化學破碎法是指利用

    酶的提取和分離純化

      (一)細胞破碎處理   許多酶都存在于細胞內。為了提取這些胞內酶,首先需要對細胞進行破碎處理。細胞破碎的方法很多,主要包括機械破碎法、物理破碎法、化學破碎法和酶學破碎法等。機械破碎法是指利用搗碎機、研磨器或勻漿器等將細胞破碎。物理破碎法是指利用溫度差、壓力差或超聲波等將細胞破碎。化學破碎法

    巨噬細胞的分離和純化

    巨噬細胞的分離1)從小鼠、豚鼠或家兔腹腔中分離巨噬細胞1.取6周左右的小鼠(或600克左右的豚鼠,或3公斤左右的家兔),剃去腹部的毛并消毒。腹腔注射1ml(豚鼠20ml,家兔200ml)無菌的液體石蠟或巰基乙酸肉湯或4%淀粉肉湯。3~4天以后收集腹腔細胞。2.如要收集腹腔靜置巨噬細胞,不注射刺激物,

    mRNA的分離和純化實驗(一)

    實驗原理從細胞或組織中得到RNA是一種混合物,其中包括tRNA,rRNA和mRNA,其中RNA為75%~ 85%,tRNA占10%~16%,而mRNA僅占1%~5%,并且mRNA基因序列不同,分子量大小不均一,各基因的表達豐度也不一樣。每克細胞可分離出5-10mg RNA。真核生物mRNA具

    簡述巨噬細胞的分離和純化

      1、取2~3公斤重的家兔,耳緣靜脈注射10ml空氣處死動物或注射2ml(含130mg)戊巴比妥麻醉動物。仰臥固定,消毒胸部,剪開胸壁。以下過程注意無菌操作。小心從環狀軟骨下方剪下氣管,分離心臟和血管,取出肺,剪去脂肪和結締組織。用無菌紗布小心擦凈肺表面,稱重。  2、分離肺泡巨噬細胞:用夾子夾住

    微生物的分離和純化

    實驗原理在土壤、水、空氣或人及動、植物體中,不同種類的微生物絕大多數都是混雜生活在一起,當我們希望獲得某一種微生物時,就必須從混雜的微生物類群中分離它,以得到只含有這一種微生物的純培養,這種獲得純培養的方法稱為微生物的分離與純化。為了獲得某種微生物的純培養,一般是根據該微生物對營養、酸堿度、氧等條件

    酶的提取和分離純化介紹

    許多酶都存在于細胞內。為了提取這些胞內酶,首先需要對細胞進行破碎處理。細胞破碎的方法很多,主要包括機械破碎法、物理破碎法、化學破碎法和酶學破碎法等。機械破碎法是指利用搗碎機、研磨器或勻漿器等將細胞破碎開來。物理破碎法是指利用溫度差、壓力差或超聲波等將細胞破碎開來。化學破碎法是指利用甲醛、丙酮等有機溶

    信使RNA的提取、分離和純化

    真核細胞的mRNA分子最顯著的結構特征是具有5’端帽子結構(m7G)和3’端的Poly(A)尾巴。絕大多數哺乳類動物細胞mRNA的3’端存在20-30個腺苷酸組成的Poly(A)尾,通常用Poly(A+)表示。這種結構為真核mRNA的提取,提供了極為方便的選擇性標志,寡聚(dT)纖維素或寡聚(U)瓊

    質粒DNA的分離、純化和鑒定

    材料、設備及試劑  一、材料  含質粒的E. coli DH5α或JM系列菌株,1.5ml塑料離心管(又稱eppendorf管),離心管架。  二、設備  微量取液器(20μl,200μl,1000μl), 臺式高速離心機,恒溫振蕩搖床, 高壓蒸汽消毒器(滅菌鍋), 渦旋振蕩器, 電泳儀,瓊脂糖平板

    酶的提取和分離純化方法

    許多酶都存在于細胞內。為了提取這些胞內酶,首先需要對細胞進行破碎處理。細胞破碎的方法很多,主要包括機械破碎法、物理破碎法、化學破碎法和酶學破碎法等。機械破碎法是指利用搗碎機、研磨器或勻漿器等將細胞破碎開來。物理破碎法是指利用溫度差、壓力差或超聲波等將細胞破碎開來。化學破碎法是指利用甲醛、丙酮等有機溶

    微生物的分離和純化

    實驗概要本文介紹了倒平板的方法和幾種分離純化微生物的基本操作技術。實驗原理在土壤、水、空氣或人及動、植物體中,不同種類的微生物絕大多數都是混雜生活在一起,當我們希望獲得某一種微生物時,就必須從混雜的微生物類群中分離它,以得到只含有這一種微生物的純培養,這種獲得純培養的方法稱為微生物的分離與純化。為了

    知識分享:mRNA的分離和純化

      實驗原理   從細胞或組織中得到RNA是一種混合物,其中包括tRNA,rRNA和mRNA,其中RNA為75%~ 85%,tRNA占10%~16%,而mRNA僅占1%~5%,并且mRNA基因序列不同,分子量大小不均一,各基因的表達豐度也不一樣。每克細胞可分離出5-10mg RNA。   真核生

    mRNA的分離和純化實驗(二)

    (三) mRNA的分離1、mRNA與Oligo(dT)-纖維素結合:用移液器重新懸浮oligo(dT)-纖維素,取適量的oligo(dT)-纖維素到RNA樣品中,蓋上蓋子,顛倒數次將oligo(dT)-纖維素與RNA混勻。于37℃水浴保溫并溫和搖蕩15min。oligo(dT)-纖維素與RNA所需量

    小鼠固有層CD11c-+細胞的分離與純化

    實驗概要固有層(LP)CD11c抗原遞呈細胞,直接獲取管腔內容物,并能直接控制CD4T細胞分化成Th1細胞,TH2或Th17細胞。小鼠LP CD11c 細胞由三個子類的細胞組成,區分于不同的細胞表面標志物,如CD11b,CD70,CX3CR1,CD103。據報道,每個子類都有其獨特的使命。使

    小鼠角質細胞的分離和培養

    實驗概要本實驗是根據Hennings等(1980)的方法改進而來的。該方案也適用于原代大鼠角質細胞的分離。主要試劑HBSS: NaCl 8g/L KCl 400mg/L KH2PO4 60mg/L 無水Na2PO4 47.86mg/L 無水葡萄糖 1000mg/L NaHCO3 350mg/L實驗

    小鼠角質細胞的分離和培養

    實驗步驟1) 將 1~2 天齡新生裸鼠窒息后,置于培養皿中,用 1% 碘聚乙烯吡咯烷酮液洗凈裸鼠, 流水徹底沖洗,然后用 70% 乙醇洗兩次。2) 上除小鼠的四肢和尾巴。3) 將小鼠從尾巴至鼻子的皮膚作一簡單切口,用大鼠牙齒鑷輕輕將整個身體的皮膚剝下,用一把鑷子夾住身體,另一把鑷子拉開皮膚。4) 將

    小鼠角質細胞的分離和培養

    實驗步驟 1) 將 1~2 天齡新生裸鼠窒息后,置于培養皿中,用 1% 碘聚乙烯吡咯烷酮液洗凈裸鼠, 流水徹底沖洗,然后用 70% 乙醇洗兩次。2) 上除小鼠的四肢和尾巴。3) 將小鼠從尾巴至鼻子的皮膚作一簡單切口,用大鼠牙齒鑷輕輕將整個身體的皮

    小鼠角質細胞的分離和培養

    實驗試劑HBSS: NaCl 8g/LKCl 400mg/LKH2PO4 60mg/L無水Na2PO4 47.86mg/L無水葡萄糖 1000mg/LNaHCO3 350mg/L實驗材料妊娠期BALB/c小鼠實驗步驟將1~2天齡新生裸鼠窒息后,置于培養皿中,用1%碘聚乙烯吡咯烷酮液洗凈裸鼠,流水徹底

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