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    發布時間:2019-10-21 07:16 原文鏈接: 熒光顯微鏡檢測支原體

               

    實驗方法原理 檢測支原體有兩種不同的策略:第一種方法將在下述方案中述及,利用對 DNA 染色的熒光染料 Hoechst 33258, 它對細胞核周圍(在細胞表面或胞質中)的特殊物質進行染色,可顯示支原體污染;第二種方法是利用 DNA 探針識別細胞提取物中的 DNA 支原體特異序列,進行支原體污染的檢測。對這個方案,照試劑供應商(fisher Scientific) 的說明進行。
    實驗步驟

    1) 準備下列液體,然后除菌并冷藏。

    無酚紅的 HBSS

    NaCl                                   8 g
    KCl                                     0.4 g
    CaCl2                                0.14 g
    MgSO4?7 H2O                  0.1g
    MgCl2?6 H2O                   0.1g
    Na2 HPO4?2 H2O           0.06 g
    KH2PO4                           0.06 g
    葡萄糖                              1.0 g
    NaHCO3                          0.35 g
    dH2O                               1000 ml

    Hoechst 1000x 貯存液

    檸檬酸/磷酸鹽緩沖液(2X)

    0.1mol/L 檸檬酸                         22.2 ml
    0.2mol/LNa2 HPO4                   27.8 ml
    用檸檬酸或 Na2 HPO4 調節 pH 為 5.5。

    2) 滴人 1~2 滴胰蛋白酶消化細胞于培養皿中的 Labtek 玻片上或蓋玻片。

    3) 加人 1~2 ml 培養液覆蓋表面,讓細胞生長 2~3 天。

    4) 準備 Camoy 固定液(應在每次用前制備新鮮的)。

    Camoy 固定液
    3 份甲醇
    1 份冰乙酸

    5) 吸干培養液,不用洗涂單層細胞并直接加人 Camoy 固定液于 Labtek 室內或培養皿中。培養皿中充滿 Camoy 固定液(約 5 ml)室溫中放置平皿 2 分鐘。

    6) 去除培養皿中液體,加人新鮮固定液以充滿室內或培養皿中(約 5 ml)。室溫中放置平皿 5 分鐘。

    7) 重復歩驟 6。

    8) 去除固定液,去除 Labtek 室的塑料外套或將培養皿的玻片拿出,讓細胞在室溫中晾干 30 分鐘或更長。

    9) 用 Hoechst1000x 儲存液(步驟 1) 配制 Hoechst 工作液。

    Hoechst 工作液

    工作液宜每次新鮮配制

    用 10ml HBSS 稀釋 0.1 ml Hoechst 儲存液(0.5ug/ml)

    用 5 ml HESS 稀釋 0.5 ml Hoechst 儲存液(0.05ug/ml)



    用 50 mlHBSS 稀釋 50ul Hoechst1000x 儲存液;每 Coplin 染缸中加人 40 ml。

    10) 室溫條件下,在 HBSS 配制的 Hoechst 工作液(終濃度為 0.05ug/ml) 中染色玻片 10 分鐘。

    11) 用 dH2O 漂洗兩次。

    12) 等體積混和甘油、梓檬酸/磷酸緩沖液(在步驟 1 中制備),制備封閉培養液以覆蓋住細胞。

    13) 在玻片和蓋玻片之間加入 2 滴封閉培養液,用紙巾輕輕吸出多余液體。

    14) 用橡膠黏合劑封閉玻片和蓋玻片。

    15) 用熒光顯微鏡觀察標本。應用激發波長為 330/380nm 和光柵過濾器 LP440nm。

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