長期以來,臨床上主要用細菌培養和血清學方法檢測病原菌,但均不能達到快速診斷細菌感染的目的。常規PCR技術采用針對特定病原菌的特異性引物,由于臨床病原菌往往不明,需用多種不同引物和擴增程序進行PCR擴增,亦難實現快速診斷。PCR-SSCP技術主要用于基因突變的檢測,利用該技術鑒定細菌雖有報道[1,2,3],但都限于臨床菌株,未與標準菌株為對照。本研究采用細菌共有的16SrRNA基因的保守區引物作為通用物。對幾種常見的細菌進行PCR擴增,SSCP分析PCR產物,并以標準菌株為對照,旨在達到快速檢測不同細菌的目的。
1. 材料和方法
1.1 材料
1.1.1 菌種:
大腸埃希菌(ATCC25922)、銅綠假單胞菌(ATCC27853)、金黃色葡萄球菌(ATCC25923)由中國藥品生物制品檢定所提供。溫州醫學院附屬二院檢驗科分離保存的臨床株—肺炎克雷伯菌、表皮葡萄球菌、松鼠葡萄球菌、甲型副傷寒沙門菌、產氣腸桿菌、洛菲不動桿菌。
1.1.2 引物:
引物設計參照文獻[3]進行,由上海生工生物工程技術服務有限公司合成,經鑒定為電泳純。
| 引物 | 序列 | 在16SrRNA基因中位置 | 擴增片段長度 |
P11P | (5’—GAGGAAGGTGGGGATGACGT) | 1173-1192 | 217bp |
P13P | (5’—AGGCCCGGGAACGTATTCAC) | 1370-1389 | |
ER10 | (5’—GGCGGACGGGTGAGTAA) | 103-119 | 255bp |
ER11 | (5’—ACTGCTGCCTCCCGTAG) | 314-357 |
1.1.3 主要儀器和試劑:
Beckman GS—15R離心機,Perkin Elmer ?DNA擴增儀,DYY—Ⅲ型穩壓電泳儀為北京六一儀器廠產品,Taq DNA聚合酶、dNTPs、100bp DNA? Ladder對照購自上海生工生物工程技術服務有限公司。
1.2 方法
1.2.1 模板DNA制備:
DNA抽提試劑盒購自上海生工生物工程技術服務有限公司,主要步驟如下:菌株于血平板上37℃培養過夜,挑取0.5cm大小的菌落懸浮于200μl ?TE中,再加入400μl裂解液、3μl蛋白酶K混勻,55℃水浴1小時。加入600μl氯仿混勻,10000轉/分離心2min。取500μl上層清夜移至1.5ml離心管中,加入500μl沉淀液混勻,室溫放置2min,10000轉/分離心2min。吸去上清液,立即加入100μl的1.2mol/L? NaCl,輕輕振蕩至DNA樣品完全溶解,加入3μl ?RNA酶A,37℃ 10min,再加入300μl預冷的g無水乙醇,-20℃放置10min,10000轉/分離心4min。吸走乙醇,用70%乙醇洗一次。倒置室溫干燥10min,100μl? TE溶解DNA。
1.2.2? PCR擴增:擴增體積50μl:10×buffer(包括Mgcl2)5μl ,20mmol/L dNTPs 1μl ,5U/μl Taq酶0.2μl,5μl模板DNA,各引物2.5μl,無菌去離子水補足體積。擴增條件:94℃1min,56℃1min,72℃30s,擴增30個循環。
1.2.3? SSCP分析:取5μl PCR產物,與等量變性上樣緩沖液(5mmol/LEDTA(PH8.0),0.05%溴酚藍,0.05%二甲苯氰,95%甲酰胺)混勻,99℃熱變性10min后,迅速置冰水浴中不停振蕩10min,10μl處理產物全部上樣,干預電泳1小時的8%非變性聚丙烯酰胺凝膠中電泳(電泳槽置于4℃冰箱中)。電泳條件 :1×TBE,4℃,16mA4h。
1.2.4 銀染:
凝膠10%乙醇固定10分鐘,1%硝酸作用4min,水洗2次,0.2%硝酸銀(新鮮配制)染20min,水洗3次,3%碳酸鈉顯色10min,最后用10%醋酸終止反應。
2. 結果
2.1 一對引物P11P—P13P擴增產物SSCP結果(見圖1):
洛菲不動桿菌、金黃色葡萄球菌SSCP圖譜呈多態性,與其他細菌可相互區別;另外5種細菌SSCP圖譜無多態性,較難區別。

2.2兩對引物(P11P-P13P,ER10-ER11)擴增產物SSCP結果(見圖2):
細菌的SSCP圖游呈多態性,單鏈條帶區條帶數目、相對遷移率及條帶之間的間距存在明顯差異,各細菌之間可相互區別。大腸埃希菌、金黃色葡萄球菌、銅綠假單胞菌的標準菌株與臨床菌株的SSCP單鏈條帶區圖譜完個一致。

3.討論
16SrRNA基因是細菌染色體上編碼rRNA相對應的DNA序列,存在于所有細菌的染色體基因中,也存在于衣原體、立克次體等原核生物中,但不存在于病毒、真菌等非原核生物中。16SrRNA基因高度保守,但其保守性是相對的,在保守區之間存在著9或10個變異區,保守區和可變區互相交錯排列,不同細菌都有不同程度的差異,可設計不同引物對所有細菌或特定細菌進行PCR檢測[4]。利用PCR技術擴增16SrRNA基因,可早期判斷是否存在細菌感染,進—步分析擴增產物鑒定病原菌的種屬,彌補了細菌培養和血清學檢測的不足。目前主要是將兩條引物設計在16SrRNA基因保守區成為通用引物,首先確定是否存在感染,然后在中間的特異區中選擇序列做探針進一步鑒定細菌[4,5],除了需PCR擴增外,還要進行探針雜交,較為復雜且費用高。李雷等[6]采用細菌16SrRNA基因通用引物,分別通過半套式PCR和套式PCR對不同細菌的DNA進行擴增,以檢測細菌,需要兩次擴增,較復雜且增加了污染的機會。另外有學者根據16SrRNA基因設計寡核苷酸引物,再將擴增產物進行DNA測序分析[7],序列分析非常特異和準確,但費時且費用高,臨床上難以推廣。
SSCP技術可區分由少至一個堿基的改變而導致的構型改變,主要用于檢測基因突變[8,9],不同細菌間的16SrRNA基因序列都有不同程度的差異,可采用SSCP進行分析。本實驗發現利用一對引物時,有5種細菌的SSCP圖譜無多態性,難以相互區別,與文獻[1,2]報道的有差異,這可能與選擇的引物序列不同有關。加入兩對通用引物后,擴增出16SrRNA基因中的1173—1389bp和103—357bp區域的靶DNA序列,由于這兩對引物位于有種屬特異性的可變區的兩側,擴增出的PCR產物有種屬特異序列,單鏈DNA的遷移率是序列依賴性的,故各菌的SSCP圖譜呈多態性,差異明顯,且其差異與親緣關系成正比,可能是由于親緣關系越近,16SrRNA基因的同源性越大,造成單鏈的構象越相似。本實驗還發現,耐甲氧西林的金黃色葡萄球菌(MRSA)與金黃色葡萄球菌的標準菌株和臨床菌株的圖譜也相同,說明該技術難以區別相同細菌的不同耐藥性。SSCP圖譜中,在單鏈條帶區前面的200-300bp之間的條帶為變性不徹底的殘留的雙鏈PCR產物。理論上講,一對引物的單鏈PCR產物在SSCP電泳時表現兩條單鏈帶[10]。但在本實驗發現,一對引物的圖譜中有的反而只有一條單鏈帶;加入兩對引物后,有的為5條甚至6條單鏈帶。
本實驗不需要探針,加入兩對通用引物,只需一次PCR擴增,整個過程只需十小時左右;同種細菌的標準菌株與臨床分離株的SSCP圖譜完全相同,若將不同細菌的標準菌株的SSCP圖譜存人數據庫作為模式圖譜,將臨床病原菌的SSCP圖譜與之比較,可簡便、快速、特異、敏感地檢測細菌,尤其適用于臨床無菌部位如血液、腦脊液的病原菌檢測。在實驗過程中要注意每一環節都嚴格無菌操作,避免出現假陽性結果。
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