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1. 斷頸處死小鼠( 5 只小鼠:(C57BI/6xDBA/2)F1 骨髓的長期培養效果好,但一些種系的骨髓的培養效果不佳,如 CBA [ Greenberger,1980 ])。
2. 用 70 % 乙醇泡濕毛發,切除兩側股骨。將 10 塊股骨放人盛有 Fischer 培養液(含有 16 mmol/L(1.32 g/L)NaHCO3,添加50 U/ml 青霉素和 50 ug/ml 鏈霉素)的 Petri 培養皿內,培養皿放在冰上。1 塊股骨含有 1.5x107~2.0x107 個有核細胞。
3. 在層流超凈工作臺操作:
(a)用紗布和拭子清除剩余的肌組織。
(b)用解剖鑷固定股骨,切斷膝關節端。21G 針頭應能緊緊地插人骨髓腔。
(c)切斷股骨的另一端,盡量靠近末端。
(d)將股骨的一端插入盛有生長培養液的 100 ml 瓶內,抽出和推壓注射器活塞數次,直至將股骨內的骨髓沖洗出來。
(e)重復操作步驟 (a)~(d),取出另外 9 塊股骨內的骨髓。
4. 用 10 ml 吸管吹打大的骨髓團塊,使骨髓分散成細胞懸液。
5. 按 10 ml 等量將細胞懸液分放入 25 cm2 培養瓶。不斷搖晃細胞懸液,以便保證將細胞均勻地分到 10 個培養瓶中。
6. 向培養瓶中充入 5 % CO2,然后擰緊蓋。
7. 在 33℃條件下,橫置培養瓶,培養細胞。
8. 每周換液 1 次。
(a)輕輕搖晃培養瓶,使附著不牢固的細胞懸起。
(b)吸去 5 ml 含有懸浮細胞的培養液。注意吸管不要觸到附著細胞層。
(c)向每個培養瓶中加入 5 ml 生長培養液(生長培養液:分裝為 100 ml。Fischer 培養液,添加 1x10-6 mol/L 氫化可的松和丁二酸鈉以及 20 % 馬血清。將氫化可的松和丁二酸鈉用 Fischer 培養液配制成儲存液,在 -20℃ 條件下儲藏)。不要將培養液直接加在附著細胞層上,以免損傷細胞。
(d)向培養瓶中充入氣體后,放入培養箱。
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