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    發布時間:2019-09-17 21:57 原文鏈接: 胰蛋白酶切磷酸化多肽作圖實驗

    • 胰蛋白酶切蛋白質樣品的制備

    • 雙向薄層電泳與層析分離多肽片段

    • 反向高效液相層析繪制多肽圖譜

               

    實驗材料

    蛋白質

    試劑、試劑盒

    甲醇 電泳緩沖液

    儀器、耗材

    凝膠電泳

    實驗步驟

    1. 用單向或者雙向凝膠電泳將 32P 標記的目的蛋白質與其他不需要的成分分開。

    2. 電泳結束后,用 50% 甲醇清洗三次,時間控制在 6 小時,去處 SDS 和電泳緩沖液將凝膠放在兩張塞熱玢膜(Bio-Rad) 之間吸干。用放射性墨水在凝膠邊緣點幾個記號。

    3. 置于 X 射線片下曝光,在讀片燈下看放射自顯影圖,找到放射標記的目的蛋白帶用干凈刀片小心地切下目的膠帶,放入帶螺帽的離心管用 0.5~1 ml 50 mol/L 碳酸氫銨泡。剝下賽璐玢膜,將膠帶修剪成更小的小條。

    4. 加一等份胰蛋白酶(1 μg 溶于 50 mmol/L 碳酸氫銨,TPCK 處理過),于 37℃ 在 360° 旋轉器中消化和洗脫幾小時或者過夜。

    5. 10000 g 離心樣品 5 分鐘。小心取出上清,用一小等份做液閃計數估計回收效率。

    6. 用真空離心濃縮器(Savant) 抽干上清。在 50 μl 碳酸氫銨中,用 0.5 μg 胰蛋白酶于 37℃ 繼續消化 4 小時。離心抽干樣品,用 20 μl pH 1.9 的電泳緩沖液重懸,以去處殘余的碳酸氫銨。再次離心抽干樣品。此時樣品已可進行電泳。

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