腫瘤細胞培養
特殊之處在于成纖維細胞的排除（成纖維細胞常與腫瘤細胞同時混雜生長，致難以純化腫瘤組織）。有以下一些方法：
1．機械刮除法
2．反復帖壁法
3．消化排除法
4．膠原酶消化法
1） 機械刮除法
1．標記：鏡下觀察，用不脫色筆在培養瓶皿的背面圈下生長腫瘤細胞的部位。
2．刮除：棄掉培養液，把無菌膠刮伸入瓶皿中，肉眼或顯微鏡窺視下，刮除無標記空間。
3．用Hanks液沖洗一兩次，洗除被刮掉的細胞。
4．注入培養液繼續培養，如發現仍有成纖維細胞殘留，可重復刮除至完全除掉為止。
2） 反復帖壁法
1．待細胞生長達一定數量后，倒出舊培養液，用胰酶消化后，Hanks沖洗2次，加入不含血清的培養液，吹打制成細胞懸液。
2．取編號為A、B、C三個培養瓶。首先把懸液接種入A培養瓶中，置溫箱中靜止培養5～20分鐘后，輕輕傾斜培養瓶，讓液體集中瓶角后慢慢吸出全部培養液，再接種入B培養瓶中后，向A瓶中補充少許完全培養液置溫箱中繼續培養。
3．培養B瓶中細胞5～20分鐘后，按處理A的方法，把培養液注入C培養瓶中，再向B瓶補加完全培養基。
3）消化排除法
1．先是用0.5％胰蛋白酶和0.02％EDTA（1：1）混合液漂洗培養基細胞一次，然后再換成新的混合繼續消化，并在倒置顯微鏡下窺視和不時搖動培養瓶，到半數細胞脫落下來后，便立即停止消化。
2．把消化液吸入離心管中，離心去上清，吸入另瓶中，加培養液置溫箱中培養，向原瓶內也補加新的培養液繼續培養。用此法處理后，成纖維細胞比腫瘤細胞易先脫落，經過幾次反復處理，可能把成纖維細胞除凈。
4）膠原酶消化法
1．可用0.5mg/ml的膠原酶消化處理，邊消化邊在倒置顯微鏡下窺視，當發現成纖維細胞被除掉后，即終止消化。
2．用Hanks洗滌處理一次后，更換新培養液，繼續培養，可獲純凈腫瘤細胞。如成纖維細胞未被除凈，可再次重復。