【結果判斷】
細胞出現程序化細胞死亡時，在瓊脂糖凝膠電泳帶上呈現有一定間隔的梯狀條帶，而細胞壞死時則呈模糊的片狀條帶（無間隔），陰性對照者僅在近電泳點樣處出現基因組條帶。
（3）流式細胞儀觀察－PI染色法
【原理及意義】
細胞凋亡時，流式細胞檢測可呈現亞二倍體核型峰的特征。此外，根據細胞光散射特
點，應用碘化丙啶（PI）染色可使之與壞死相區別。在ＤＮＡ直方圖上，凋亡細胞出現亞二倍體峰，表現為二倍體峰（Ｇ１細胞）的減少，在Ｇ１峰左側出現亞二倍體細胞群的峰型。而壞死時，細胞周期中的細胞均出現不同程度的減少，亞二倍體細胞量多少不等。在光散射圖譜上，前向光散射與細胞大小有關，細胞凋亡時常表現為細胞皺縮，故前向光散射低于正常。細胞壞死時，常表現為細胞腫脹，故前向光散射高于正常。側向光散射與細胞內粒子性質有關，由于細胞凋亡或壞死均有細胞內碎片增多，故側向光散射均高于正常。總之，細胞凋亡出現低于正常的前向散射和較高的側散射，壞死時則呈較高的前、側散射光譜。
【材料】
１試劑：碘化丙啶（PI）染色液，Rnase（1mg/mL），70%冷乙醇，0.01mol/L、Ph7.2PBS。
２器材：試管，流式細胞儀。
【方法】
（a）標本制備
１培養細胞
（１）收集懸浮細胞于離心管中。貼壁細胞視情用酶消化后制成單細胞懸液，懸浮細胞合并。
（２）800～1000ｒ/min離心，5min，共2次。
（３）用400目篩網過濾2次。
２新鮮實體組織
（１）取材組織用PBS漂洗干凈后，浸泡在含PBS的平皿或青霉素小瓶中。
（２）用眼科剪盡可能將組織剪碎。
（３）吸去上清液，組織塊轉入大瓶中加入10～20mL組織消化酶（含200μｇ/mL膠原酶），37℃，30min，并在磁力攪拌器上攪拌。
（４）在不銹鋼網上輕輕研磨，使組織和細胞分離。
（５）濾液用200目篩網過濾2次。
（b）熒光染色：上述細胞制備后均應進行熒光染色。
（１）制備的單細胞懸液可用70%乙醇固定，4℃保存。
（２）染色前用PBS進行離心沉淀去除固定液。
（３）加200uL RnaseＡ，37℃水浴30min。
（４）再加入800uLPI染色液混勻，至4℃避光30min。
（５）上機測試。記錄激發波長488nm處紅色熒光。
【結果】
細胞凋亡時，G1峰左側出現亞二倍體細胞群的峰型。在光散射圖譜上，前向光散射低于正常，側向光散射高于正常。細胞壞死時，細胞周期中的細胞均出現不同程度的減少，亞二倍體細胞量多少不等。在光散射圖譜上，前向光散射和側向光散射均高于正常。
【注意事項】
懸浮細胞收集時要保證足夠數量，否則影響結果準確性。