實驗概要
本實驗介紹了由轉座子插入引起基因突變的原理和實驗方法。
實驗原理
轉座子(Tn)是能在不同復制子之間轉移位置的核苷酸順序。它一般來自抗藥性質粒,由一個或幾個抗藥性基因加上兩端兩個順序相同(但是方向不一定相同)的核苷酸片段(稱為插入順序IS)構成。當一個轉座子轉移位置而插入某一基因時,能使這一基因失活,即發生突變。各個轉座子的抗藥性基因、轉移頻率、插入位置、插入順序都可以不同。有些轉座子對于染色體的各個位置插入沒有偏向,而另一些則偏向于插入某些特定的位置。
轉座子的插入突變有兩上表型效應,即基因突變的表型效應和由轉座子帶來的抗藥性。因此利用轉座子可以有效地取得任何一種突變型。一個很有效的方法是通過轉座子誘發F’因子上的染色體基因的插入突變。
大腸桿菌2-2菌株的染色體上攜帶有Tn5轉座子(含kan抗性基因)。要使Tn5插入到F’ Lac Pro /Strs的乳糖發酵基因中去以引起Lac 突變,可先將這一F’因子轉移到Δ(Lac Pro)Strr受體細胞中去,再觀察是否發生了插入突變。在能排除供體的含鏈霉素的培養基上選擇Pro 受體菌落,若是抗卡那霉素的,那就是說受體細菌不但接受了F’因子,而且這一F’因子帶有Tn5,如果它又由Lac 變為Lac-,不能在以乳糖為唯一碳源的培養基上生長,那么,這一插入位置就是在乳糖發酵基因中。
為進一步提高效率,還可以采取一種措施,使在特定條件下Lac 細菌不能生存而Lac-細菌能夠生存。已經知道galE突變型在有乳糖和半乳糖存在的情況下,由于細胞中積累有毒的半乳糖代謝中間產物UDP-gal和gal-1-P而死亡,所以如果采用galE突變型作為受體細菌,在含有0.02%乳糖和0.2%甘油的基本基上,受體細菌如果接受了一個F’Lac Pro ,就不能生存。如果lac 基因由于插入了Tn5而成為lac ,那么受體細菌便能生存下來。
主要試劑
1. LB完全培養液,每組4支,每支5ml。
2. 無菌生理鹽水,每組6支,每支4.5ml。
3. L選擇培養基:含鏈霉素、卡那霉素、乳糖和甘油的基本培養基,每組6皿。
4. G選擇培養基:含鏈霉素和葡萄糖的基本培養基,每組5皿。
主要設備
1. 37℃搖床
2. 250ml三角瓶
3. 培養皿
4. 超凈工作臺
實驗材料
1. 受體菌:F-/Δ(lac proB) gaE strr。
2. 供體菌:F’lac pro /Δ(lac pro)nalr帶Tn5于染色體某處。
實驗步驟
1. 第一天傍晚,分別接一環供體菌和一環受體菌于兩支5ml LB培養液中,37℃搖床上培養過夜。
2. 第二天,取兩個內含4ml LB培養液的250ml三角瓶,分別加入1ml過夜培養的供體菌及受體菌,在37℃搖床上培養2-3小時。
3. 將新鮮培養的供體菌及受體菌各取1ml,在一無菌的250ml三角瓶中混合,37℃輕搖60分鐘。
4. 吸取0.5ml混合菌液,用生理鹽水稀釋10-6倍。
5. 從10-1倍稀釋液中吸取0.1ml涂于L選擇培養基平板上,將供體菌及受體菌分別吸取0.1ml涂于L培養基上作為對照。再從10-2、10-3、10-6倍稀釋液中各吸0.1ml分別涂于G培養基平板上。37℃培育二天。
6. 觀察、統計并計算:
1) 接受了供體F’(Lac Pro )的受體菌的數目:G板上生長的菌落數(個/ml)。
2) 在L板上生長的菌落數(個/ml),即Tn5插入到lac基因上菌落數。
3) 計算Tn5轉座到lac Z或lacY上的轉座頻率,在L板上生長的菌落數/在G板上生長的菌落數。
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