A 原代細胞分離技術
取人或動物體內（或胚胎）的組織，將其剪碎至1mm3的組織塊，再采用的如下方法進行分離培養：
一、懸浮細胞的分離方法
1、將血液、羊水、胸水或腹水等懸液直接轉至離心管中，1000rpm/分鐘離心5分鐘。
2、去掉上清，離心沉淀用無鈣、鎂的PBS清洗后1000rpm/分鐘離心5分鐘。此步重復兩次。
3、用培養基重懸，調整適當細胞濃度后分瓶培養。
4、如選用懸液中某種細胞，可采用離心后的細胞分層液收獲目的細胞。
二、實體組織材料的分離方法
（一）機械分散法
1、纖維成分很少的腦組織，部分胚胎組織，用剪刀剪碎至1mm3的組織塊。
2、用PBS清洗兩次后
①用吸管吹打，分散組織細胞。
②或將已充分剪碎分散的組織放在注射器內（用九號針），使細胞通過針頭壓出。
③或在不銹鋼紗網內用鈍物（注射器鈍端）壓擠使細胞從網孔中壓擠出。
3、收集細胞轉入離心管中，1000rpm/分鐘離心5分鐘。
4、去上清，加入含血清的培養基，重懸后移至培養瓶中培養。
（二）消化分離法
1、酶消化分離法（過夜冷消化法）
①細胞間質較少的軟組織，如肝、腎、甲狀腺、羊膜、胚胎組織、上皮組織等，用Hanks液清洗組織三次，剪成碎塊大小為4毫米左右。
②再用Hanks液洗2-3次以除去血球和脂肪組織。
③加入0.25%的胰蛋白酶，搖勻后放4℃過夜。
④次日再用Hanks液洗滌，棄去上清，共洗2-3次。
⑤加入少量含血清的培養基吹打分散，細胞計數，按適當的濃度分瓶培養。
2、非酶消化法（EDTA消化法）
①把組織塊剪碎，呈1mm3大小的組織塊。
②將碎組織塊在平皿中用無鈣鎂PBS洗2-3次。
③加入消化液（胰蛋白酶或膠原酶或EDTA）于37℃水浴中作用適當時間（中間可輕搖1~2次），若組織塊膨松呈絮狀可終止，若變化不大可更換一次消化液，繼續消化直至膨松絮狀為止。
④棄去上清，加入含有鈣、鎂離子的培養基中止消化反應，并洗滌2-3次后，加入完全培養基。
⑤用吸管吹打，使細胞充分散開后用紗網過濾后分瓶培養。
B 原代細胞無血清培養技術
1、棄去培養基廢液。
2、消化：加入1ml 0.125％胰酶溶液，轉動培養瓶使酶液浸沒瓶底，溫浴消化2-3分鐘。
3、終止：用無血清培養基終止酶反應。
4、離心：收集中和了的培養液，于15ml 的離心管中 1000rmp 離心10分鐘。
5、細胞重懸：棄去上清，加入1ml 無血清培養基用吸管將貼壁的細胞吹打成懸液。
6、細胞計數：血球計數板計數細胞，并換算出細胞數量。
7、接種分瓶： 將細胞接種到含4ml無血清培養基的培養瓶中，37℃，5% CO2培養箱中培養。
8、鏡檢觀察：次日觀察貼壁率，細胞形態等。
C 原代細胞培養技術
一、組織塊直接培養法
1、取材，用Hank’s液洗滌三次，并剔除脂肪，結締組織，血液等雜物。
2、用手術剪將組織剪切成1mm3左右的小塊，再用Hank’s液洗三次。
3、將組織塊轉移至培養瓶，并貼附于瓶底面。
4、輕輕將培養瓶翻轉，瓶底朝上，向瓶內注入適量的培養液，將培養瓶放置在37℃恒溫箱內培養。
5、放置待組織小塊貼附后，將培養瓶慢慢翻轉平放，使組織浸入培養液中（勿使組織漂起），37℃繼續培養。
二、消化培養法
1、取材，用Hank’s液洗滌三次，并剔除脂肪，結締組織，血液等雜物。
2、用手術剪將組織剪切成1mm3左右的小塊，再用Hank’s液洗三次。
3、視組織塊量加入酶液，37℃中消化20—40分鐘，每隔5分鐘振蕩一次，或用吸管吹打一次，使細胞分離。
4、加入3—5ml培養液以終止酶消化作用（或加入相關酶抑制劑）。
5、靜置5—10分鐘，使未分散的組織塊下沉，取懸液加入到離心管中。
6、1000rpm，離心10分鐘，棄上清液。
7、加入Hank’s液5ml，沖散細胞，再離心一次，棄上清液。
8、加入培養液1—2ml（視細胞量），血球計數板計數。
9、將細胞轉移到培養瓶中，37℃下培養。
三、 器官培養
1、將不銹網做成支架形狀，調整其高度至培養皿的1/2深度平面，在其表面放置0.5μm孔徑濾膜。
2、將培養液加入培養皿中，使液面剛剛接觸到濾膜，但不要使其浮起。
3、將要培養器官組織放在濾膜上，一般厚度不要超過200μm，水平面積不超過10mm2。
4、將上述準備好的培養物放入CO2培養箱，并加注氧氣調整氧分壓，最好到90%。
5、培養過程中要注意觀察培養液平面，盡可能保持在與濾膜一致的水平上。
6、上述可進行器官培養1-3周，每2-3天換液一次，并根據情況做進一步實驗和檢測。
D 原代細胞傳代技術
一、貼壁細胞的消化法傳代
1、吸除或倒掉瓶內舊培養液。
2、加入1ml左右消化液（胰蛋白酶或與EDTA混合液）輕輕搖動培養瓶，使瓶底細胞都浸入溶液中。
3、消化2-5分鐘后把培養瓶放置在顯微鏡下進行觀察，發現原貼壁的細胞逐漸趨于圓形，在還未漂起時，棄去消化液，加入培養液終止消化。
4、用吸管將貼壁的細胞吹打成懸液，分別接種到另外兩到三個培養瓶中，置37℃培養箱中繼續培養。第二天觀察貼壁生長情況。
二、懸浮細胞的傳代
1、直接傳代
① 讓懸浮細胞慢慢沉淀在瓶底后，將上清吸掉1/2-2/3。
② 用吸管吹打形成細胞懸液后，分別接種到另外兩到三個培養瓶中，置37℃培養箱中培養。
2、離心法傳代
① 將細胞連同培養液一并轉移到離心管內，離心800-1000rpm，5分鐘。
② 去除上清，加新的培養液到離心管內，用吸管吹打使之形成細胞懸液。
③ 將細胞懸液分別接種到另外兩到三個培養瓶中，置37℃培養箱中培養。
E 原代細胞染色技術
一．臺盼藍染色
（1）制備單個細胞懸液，并作適當稀釋（106細胞/ml)。
（2）染色：取9滴細胞懸液移入小試管中，加一滴0.4%臺盼藍溶液，混勻。
（3）計數：在3分鐘內，用血球計數板分別計數活細胞和死細胞。
（4）鏡下觀察，死細胞被染成藍色，而活細胞拒染。
（5）根據下式求細胞活力:
二．伊紅Y染色
（1）制備1×106-5×106細胞／ml的細胞懸液。
（2）取0.1ml細胞懸液加0.1ml伊紅Y染液混合。
（3）用計數板鏡下計數活、死細胞數。
（4）鏡下觀察，著紅色的為死細胞。按公式計算細胞活力。
三．苯胺黑染色實驗
（1）制備1×106-5×106細胞／ml的細胞懸液。
（2）將1份1%苯胺黑溶液與含血清生理鹽水作1：9混合稀釋，使其成0.1%苯胺黑染液。
（3）取0.1ml細胞懸液加0.1ml苯胺黑染液混合。室溫放置10分鐘。
（4）用計數板鏡下計數 ，黑色細胞為死細胞，按公式計算活細胞率。
F 原代細胞計數技術
1、準備計數板：用酒精清潔計數板及專用蓋玻片，然后輕輕拭干。
2、制備細胞懸液：用消化液分散單層培養細胞或直接收集懸浮培養細胞，制成單個細胞懸液。要求細胞密度不低于104/ml，若細胞數很少，應將懸液離心（1000rpm，2分鐘），重懸浮于少量培養液中。
3、加樣：用習慣輕吹打細胞懸液，取少許細胞懸液，在計數板上蓋玻片的一側加微量細胞懸液。
4、計數：計算計數板四大格細胞總數，壓線細胞只計左側和上方的。然后按下式計算：
細胞數/ml＝4大格細胞總數/ 4×10000。
G 原代細胞鑒定技術
一、形態學鑒定
1. 在倒置顯微鏡中直接觀察活細胞的形態學特征
2. 細胞染色檢查 ：
a) 將無菌玻片置于細胞培養皿中，加細胞懸液后培養；
b) 待細胞長滿玻片后取出，用PBS清洗，之后放于載玻片上，待其自然干燥；
c) 用PBS/甲醇（1:1）固定15分鐘；
d) 棄固定液，加合適的染色液染色；
e) 染色完畢后用清水洗凈，置于空氣中干燥，
f) 干燥后，用二甲苯透明，光學樹脂封片后觀察。
二、免疫組織細胞化學鑒定
1. 將無菌的蓋玻片置于細胞培養皿中，將細胞懸液接種于培養皿中進行細胞爬片；
2. PBS清洗標本3次，各1 分鐘；
3. 4%多聚甲醛固定15分鐘；
4. 置于空氣中干燥；
5. PBS清洗標本3次，各2 分鐘；
6. 0.5%Triton X-100孵育 1次20分鐘；
7. PBS清洗標本 3次 各2分鐘；
8. 3%H2O2孵育 15分鐘；
9. DPBS清洗標本 3次 各2 分鐘；
10. 封閉血清孵育（5%正常二抗血清DPBS液20分鐘）
11. 一抗孵育，4℃ 過夜或37℃ 60 分鐘；
12. PBS清洗標本3次 各5 分鐘；
13. 二抗工作液孵育（濕盒）37℃ 30 分鐘；
14. PBS清洗標本3次 各5 分鐘；
15. C液（濕盒） 37℃ 30 分鐘；
16. PBS清洗標本3次，各5 分鐘；
17. 用顯色液進行顯色；
18. 蒸餾水洗滌2次1 分鐘；
19. 蘇木素復染1分鐘；
20. 清水洗滌30分鐘；
21. 光學樹脂封片后觀察。
H 原代細胞凍存技術
1、選用生長情況好，數量較多的原代細胞，凍存前一天換液一次。
2、貼壁細胞需用0.25％胰酶常規消化將細胞消化下來，將細胞懸液收集至離心管中。
3、1000rpm離心5分鐘，棄上清液。
4、沉淀加含DMSO的培養液，計數，調整至（1-10）×106/ml。
5、將懸液分至凍存管中，每管1 ml。
6、密封凍存管，封口一定要嚴，否則復蘇時易出現爆裂。
7、用記號筆標明細胞種類，凍存日期。
8、按下列順序降溫：室溫→4℃（20分鐘〕→冰箱冷凍室（30分鐘）→超低溫冰箱（－80℃過夜）→液氮。
I 原代細胞復蘇技術
1、取出細胞，迅速放入37℃溫水中快速解凍。
2、吸出細胞懸液，并加10倍以上培養液。
3、1000r/分鐘離心5分鐘，去除上清。
4、用培養液適當稀釋后接種培養瓶，放入37℃ CO2培養箱靜置培養。
鏡檢細胞貼壁能力。次日更換一次培養液，繼續培養。