八、使用說明
操作步驟（可直接在玻片上涂布）
1.滅菌的ddH2O 1:10稀釋該多聚賴氨酸溶液。
2.用之前將稀釋的多聚賴氨酸溶液放在室內，使其溫度到室溫18-26℃
3.將玻片浸在稀釋的多聚賴氨酸溶液5分鐘。注意增加時間不會提高包被效果。
4.在60℃烘箱1小時干燥，或室溫18-26℃過夜干燥待用。
九、注意事項
1.每100mL已稀釋的多聚賴氨酸溶液要包被的玻片40-90張， 超過90張片子將影響其黏合力。
2.用之前的玻片必須保持清潔。必要時用含1% HCl的70%乙醇溶液來清洗。
3.不要在用過的稀釋液中加新的溶液。
4.釋過的多聚賴氨酸溶液要放在2-8℃，至少在3個月內是穩定的。
5.用過的稀釋液要過濾，若出現渾濁或長菌要丟棄。
十、將0.5%多聚賴氨酸溶液加入細胞培養皿中，浸泡5-10分鐘并自然晾干待用即可。
十一、多聚賴氨酸(poly-l-lysine)：常用包被培養皿的基質之一.。
1.配制硼酸緩沖液（PH8.4）
A液：硼砂溶液－－1.907g溶于100ml三蒸水（0.05M）
B液：硼酸溶液－－1.237g溶于100ml三蒸水（0.2M）
4.5mlA液＋5.5mlB液＝硼酸緩沖液（PH8.4）
2.多聚賴氨酸5mg溶于50ml硼酸緩沖液中，配成100μg/ml的多聚賴氨酸溶液。過濾除菌，－20度保存。
3.使用時4倍稀釋，可以重復使用3次！
十二、聽說一般買來的多聚賴氨酸都是用了做免疫組化時用的，一般都加了防腐劑，不利于細胞培養。所以我以前都是自制鼠尾膠原。請教midas主任，不知道這種說法是否正確？
答:我不知道別的地方PLL的來源，不過我們這里是sigma的粉劑，而且注明是for cell culture。
如果多聚賴氨酸中有防腐劑那么肯定不適合細胞培養！
十三、一些參考書上有的用三蒸水，有的用PBS配置，這與你說的很有出入，是不是三種配法都可以？不知道那一種更合理些？
答：其實都可以，不過這是推薦的方法！（用硼酸緩沖液）
十四、主任，按照您的配方，多聚賴氨酸的使用濃度應該是0.025mg/ml，目前我們實驗室的使用濃度是0.1mg/ml，這個濃度來源于上海腦所．我想請問一下，我們用的濃度是否偏高，我培養的是大鼠星形膠質細胞，如果用您推薦的濃度，細胞是否容易貼壁．謝謝！
答：有些文獻上也是用的0.1mg/ml，但是我們在實際工作中用0.025mg/ml是完全可以的。
方法是至少包被4h以上，過夜也可以（可重復用3次）！之后無菌水清洗，晾干后即可使用。
用于配養細胞的多聚賴氨酸分子量要求>70,000，一般常見的分子量有70,000～150,000，150,000～300,000
和>300,000，分子量越大，黏附力越強，但相對完全溶解較困難，所以我推薦使用150,000～300,000比較好。
多聚賴氨酸的工作濃度各家文獻報道相差很大，從0.25 mg/ml到0.01mg/ml都有，因為多聚賴氨酸對細胞有毒性，所以在保證貼附的前提下，濃度越低越好，還省錢。我現在用的是0.01mg/ml。
多聚賴氨酸的配制濃度在各個書上不一，我也在做原位雜交，濃度是0.01mg/ml比較好吧
十五、請問多聚賴氨酸（150000——300000）如何配置？保存？工作濃度？
答：多聚賴氨酸應該是避光保存的．
我們實驗室使用的方法如下，希望對你有用：
多聚賴氨酸（Poly-L-Lycine,PLL）
試劑：多聚賴氧酸 5g
蒸餾水 1000ml
配制方法：稱取PLL，溶于H2O，充分混合即可，此液濃度為0.5%，可適當稀釋配成0.01～0.5%濃度。4℃保存，也可 -20℃備用。PLL可反復冰凍，效果無明顯影響，工作液常再稀釋10～50倍。
我的使用方法如下：
先配制成10mg/ml的濃縮液，使用前按照1：80稀釋，制成工作液，濃度25ug/ml,可用于包被培養皿。